Factores que dificultan la inseminación artificial en ovinos, y su impacto en las tasas de fertilidad, preñez y parto
Revisión sistemática de literatura
Introducción: la creciente importancia de la producción ovina en Colombia, su inventario nacional de 1.578.684, la producción en toneladas de carne/año y el incremento de su consumo per cápita de 350 a 500 gramos por persona/año, demanda intervenciones para mejorar los indicadores reproductivos de la especie, con el apoyo, entre otros, del uso de las biotecnologías reproductivas. Por esto es pertinente identificar los factores que dificultan la inseminación artificial (IA) en ovinos, con el fin de intervenir sobre ellos y contribuir a la mejora de sus indicadores reproductivos y el bienestar de los productores.
Metodología: se realizó una revisión sistemática de literatura para identificar los principales factores reportados, que dificultan la preñez vía inseminación artificial en ovinos. Para la selección de artículos, se tuvo en cuenta su carácter de acceso abierto, y se consultaron productos de investigación relacionados con los parámetros morfométricos, técnicas que de IA que atraviesan el cérvix (IAV, IAC, IATC) e IA laparoscópica, formas de conservación del semen (fresco, refrigerado y congelado-descongelado) y protocolos de sincronización de celo, que incluyeran dentro de sus resultados tasas de fertilidad, preñez o partos. Se excluyeron artículos escritos en idiomas diferentes al español, portugués e inglés, especies diferentes a la ovina, lo mismo que resultados que no incorporaban protocolos de sincronización, la presentación del semen, el tipo de técnica de IA utilizada, las tasas de fertilidad, preñez o partos.
Resultados: se seleccionaron 44 artículos los cuales cumplían con los criterios de inclusión, de los cuales 15 se relacionaban con los parámetros morfométricos, formas del orificio cervical y su correlación con la edad, y 29 se relacionaron con las técnicas de IA, los tipos de conservación del semen, protocolos de sincronización y su correlación con las tasas de fertilidad, preñez y partos.
Conclusiones: este trabajo mostró que los principales factores que dificultan la preñez por IA en ovinos son: la edad de los animales, los parámetros morfométricos del cérvix, el tipo de técnica de IA y la presentación del semen.
Cómo citar
Licencia
En calidad de autor del artículo, declaro que este, es un trabajo original, inédito, de mi creación exclusiva, que no se ha postulado a evaluación simultánea en otra publicación y que no cuenta con algún impedimento de cualquier naturaleza para la concesión de los derechos previstos en este contrato.
En ese sentido, me comprometo a esperar un resultado de evaluación de la revista, antes de considerar su presentación a otro medio, en caso de que la respuesta de publicación no sea positiva; adicionalmente, me comprometo a responder por cualquier acción de reivindicación, plagio u otra clase de reclamación que al respecto pudiera sobrevivir por parte de terceros.
Asimismo, declaro que como autor o coautor, estoy de acuerdo por completo con los contenidos presentados en este trabajo y cedo todos los derechos patrimoniales, es decir, la reproducción, comunicación pública, distribución, divulgación, transformación, puesta a disposición y demás formas de explotación de la obra por cualquier medio o procedimiento, a la revista y a la Editorial de la Universidad Cooperativa de Colombia.
Lonergan P. Review: Historical and futuristic developments in bovine semen technology. Animal. 2018;12(s1):s4-18. . doi: 10.1017/S175173111800071X.
Muñoz DL. Acuerdo nacional de competitividad. Cadena productiva ovino-caprina nacional. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rial [Internet]. 2012;1-89. Disponible en: https://sioc.minagricultura.gov.co/OvinoCaprina/Normatividad/Nuevo%20Acuerdo%20Nacional%20de%20Competitividad%202012.pdf
Instituto Colombiano Agropecuario. Censo Pecuario Nacional – 2017. 2017 [Internet]. Disponible en: https://www.ica.gov.co/Areas/Pecuaria/Servicios/Epidemiologia-Veterinaria/Censos-2016/Censo-2017.aspx
ICA. Censo-ovino-2017 [Internet]. Disponible en: https://www.ica.gov.co/Areas/Pecuaria/Servicios/Epidemiologia-Veterinaria/Censos-2016/Censo-2017.aspx
Kaabi M, Álvarez M, Anel E, Chamorro CA, Boixo JC, de Paz P, et al. Influence of breed and age on morphometry and depth of inseminating catheter penetration in the ewe cervix: A postmortem study. Theriogenology Theriogenology. 2006 nov.;66(8):1876-83. doi: 10.1016/j.theriogenology.2006.04.039
Souza M, Nadal Da S, Dias Goncalves P NJ. Características morfométricas y penetrabilidad. Cienc Rural St Maria. 1994;24(3):591-5.
Cruz Júnior CA, Mcmanus C, Jivago JLPR, Bernardi M, Lucci CM. Anatomical and histological characterization of the cervix in Santa Inês hair ewes. Anim Reprod [Internet]. 2014;11(1):49-55. Disponible en: http://www.cbra.org.br/pages/publicacoes/animalreproduction/issues/download/v11n1/pag49-55(AR594).pdf
Franco MC, dos Santos JF, Maciel TA, Neto PJD, Oliveira D. Morphology of the cervix of santa ines adult sheep in luteal and folicular phases | Morfologia da cérvice de ovelhas santa inês adultas nas fases luteínica e folicular. Cienc Anim Bras. 2014;15(4):495-501.
Gultiken N, Gultiken ME, Anadol E, Kabak M, Findik M. Morphometric study of the cervical canal in Karayaka ewe. J Anim Vet Adv. 2009;8(11):2247-50.
Breda JC, Sotomaior C. Dados de alguns parâmetros anatômicos do aparelho reprodutivo de ovelhas da some anatomical parameters of the reproductive tract from sheep of the Hampshire Down and Crossbre Hampshire Down-Ile de France. 2007;5(3):237-242.
Naqvi SMK, Pandey GK, Gautam KK, Joshi A, Geethalakshmi V, Mittal JP. Evaluation of gross anatomical features of cervix of tropical sheep using cervical silicone moulds. Anim Reprod Sci. 2005 Feb;85(3-4):337-44. doi: 10.1016/j.anireprosci.2003.10.007
Eppleston J, Salamon S, Moore NW, Evans G. The depth of cervical insemination and site of intrauterine insemination and their relationship to the fertility of frozen-thawed ram semen. Anim Reprod Sci. 1994;36(3-4):211-25.
Leethongdee S. Development of Trans-Cervical Artificial Insemination in Sheep With Special Reference To Anatomy of Cervix. Suranaree J Sci Technol. 2016;17(1):57-69.
Halbert GW, Dobson H, Walton JS, Buckrell BC. The structure of the cervical canal of the ewe. Theriogenology 2017;33(5):977-92. doi: https://doi.org/10.1016/0093-691X(90)90060-7
Dun RB. The Cervix of the Ewe-Its Importance in Artificial Insemination of Sheep. Aust Vet J. 1955;1-3. doi: https://doi.org/10.1111/j.1751-0813.1955.tb05513.x
Moura DS, Lourenço TT, Moscardini MM, Scott C, Fonseca PO, Souza FF. Aspectos morfológicos da cérvice de ovelhas. Pesqui Vet Bras. 2011;31(suppl. 1):33-8.
Richardson L, Hanrahan JP, Donovan A, Martí JI, Fair S, Evans ACO, et al. Effect of site of deposition on the fertility of sheep inseminated with frozen-thawed semen. Anim Reprod Sci. 2012;131(3):160-4. doi: 10.1016/j.anireprosci.2012.03.006.
Kershaw CM, Khalid M, McGowan MR, Ingram K, Leethongdee S, Wax G, et al. The anatomy of the sheep cervix and its influence on the transcervical passage of an inseminating pipette into the uterine lumen. Theriogenology. 2005;64(5):1225-35.
Álvarez, M.; Kaabi, M.; Boixo, J.C.; Anel, E.; Chamorro, CA;Martínez, S. García C; Anel L. Valoración morfométrica del canal cervical de la oveja mediante imágenes de resonancia magnética. Itea Prod Anim. 2001; Extra:3-5.
Candappa I, Bartlewski P. A review of advances in artificial insemination (AI) and embryo transfer (ET) in sheep, with the special reference to hormonal induction of cervical dilation and its. Open Reprod Sci J 2011;3:162-75. doi: 10.2174/1874255601103010162
Fang Y, Zhong R, Zhang X, Zhang J, Zhou D. Boar seminal plasma inhibits cryo-capacitation of frozen-thawed ram sperm and improves fertility following intracervical insemination. Theriogenology 2018;105:84-9. doi: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2017.09.011
Barbas JP, Horta AEM, Marques CC, Baptista MC, Mascarenhas RD, Martins DO, et al. The fertility increase after misoprostol administration is differently expressed when sheep are inseminated with chilled or frozen-thawed semen. Small Rumin Res. 2013;113(2-3):398-401.
Pfeifer LFM, Rabassa VR, Neto JW da S, Meneghello L de C, Castilho EM, Severo NC, et al. Efeito da aplicação de flunixin meglumine sobre a taxa de gestação de ovelhas inseminadas via transcervical. Acta Sci Vet. 2010;38(3):307-10.
Anel L, Kaabi M, Abroug B, Alvarez M, Anel E, Boixo JC, et al. Factors influencing the success of vaginal and laparoscopic artificial insemination in churra ewes: A field assay. Theriogenology. 2005;63(4):1235-47.
Masoudi R, Zare Shahneh A, Towhidi A, Kohram H, Akbarisharif A, Sharafi M. Fertility response of artificial insemination methods in sheep with fresh and frozen-thawed semen. Cryobiology. 2017;74:77-80.
Horta AEM, Barbas JP, Marques CC, Baptista MC, Vasques MI, Pereira RM, et al. Improvement of fertility in artificially inseminated ewes following vaginal treatment with misoprostol plus terbutaline sulphate. Reprod Domest Anim. 2010;45(6):412-6.
Manes J, Hozbor F, Alberio R, Ungerfeld R. Intravaginal placebo sponges affect negatively the conception rate in sheep. Small Rumin Res. 2014;120(1):108-11. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.smallrumres.2014.05.006
Gündüz MC, Turna Ö, Cirit Ü, Uçmak M, Tek Ç, Sabuncu A, et al. Lambing rates and litter size following carazolol administration prior to insemination in Kivircik ewes. Anim Reprod Sci. 2010;118(1):32-6.
Allaoui A, Tlidjane M, Safsaf B, Laghrour W. Comparative Study between Ovine Artificial Insemination and Free Mating in Ouled Djellal Breed. APCBEE Procedia 2014;8(Caas 2013):254-9. doi: https://doi.org/10.1016/j.apcbee.2014.03.036
Cardoso E, Da Cruz, JF, Ferraz RC. N.; Teixeira-Neto MR, Dos Santos RS Avaliação econômica de diferentes técnicas de inseminação artificial em ovinos da raça Santa Inês 1. Rev Bras Ciências Agrárias. 2009;4(2):217-22.
Álvarez M, Chamorro CA, Kaabi M, Anel-López L, Boixo JC, Anel E, et al. Design and «in vivo» evaluation of two adapted catheters for intrauterine transcervical insemination in sheep. Anim Reprod Sci. 2012;131(3-4):153-9. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.anireprosci.2012.03.001
Casali R, Pinczak A, Cuadro F, Guillen-Muñoz JM, Mezzalira A, Menchaca A. Semen deposition by cervical, transcervical and intrauterine route for fixed-time artificial insemination (FTAI) in the ewe. Theriogenology. 2017; 103:30-5.
Andersen VK, Aamdal J, Fougner JA. Intrauterine and deep cervical insemination with frozen semen in sheep. Reprod Domest Anim. 1973;8(3):113-8.
Ghalsasi PM, Nimbkar C. Evaluation of laparoscopic intrauterine insemination in ewes. Small Rumin Res. 1996;23(1):69-73.
Fierro S, Olivera-Muzante J. Long interval prostaglandin as an alternative to progesterone-eCG based protocols for timed AI in sheep. Anim Reprod Sci. 2017; 180:78-84. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.anireprosci.2017.03.004
Rashidi M, Cedden F. Trans-Cervical Artificial Insemination in Ewes During Out of Breeding Season. Maced J Anim Sci. 2013;3(2):143-6.
Naim, P. Cueto, M. Gibbons A. Inseminación Artificial a Tiempo Fijo (I.A.T.F). Arch Zootec [Internet]. 2009;46(223):203,206. Disponible en: https://inta.gob.ar/sites/default/files/script-tmp-inta_ganaderia46_inseminacion_ovina.pdf
Antunes-Melo KD, Oliveira VS, Santos ADF, Oliveira CA, Mendonça LM, Goveia JSS, et al. Use of reduced doses of eCG applied by different routes in the TAI program in Santa Ines sheep. Semin Ciências Agrárias. 2015;36(3):1347-54. doi: 10.5433/1679-0359.2015v36n3p1347
Kohram H, Seifi-Jamadi, Masoudi R, Sharafi M, Moein Aledavood SD, Sadeghpanah A. Effects of estradiol and oxytocin injection on the efficiency of artificial insemination in Iranian Zel ewes during the breeding season. Arch Razi Inst. 2017;72(1):33-41. doi: DOI: http://dx.doi.org/10.22034/ari.2016.107489
Masoudi R, Shahneh AZ, Towhidi A, Kohram H, Akbarisharif A, Sharafi M, et al. Cervical dilation and improvement of reproductive performance in fat-tailed ewes via cervical dilator treatments. Asian Pacific J Reprod. 2017;6(2):93-6. doi: doi: 10.12980/apjr.6.20170209
Avendeño-Reyes L, Alvarez-Valenzuela FD, Molina-Ramírez L, Rangel-Santos R, Correa-Calderón A, Rodríguez-García J, et al. Reproduction performance of Pelibuey ewes in response to estrus synchronization and artificial insemination in Northwestern Mexico. Journal of Animal and Veterinary Advances [Internet]. 2007;6(7): Disponible en: 807-12. http://medwelljournals.com/abstract/?doi=javaa.2007.807.812
Fukui Y, Fujii M, Tashiro Y. Insemination Doses of Frozen-Thawed Semen in Seasonally Anestrous Ewes Treated with Two Different Progesterone-Impregnated Intravaginal Devices. J Reprod Dev Reprod Dev [Internet]. 1993;39(39):269-73. Disponible en: https://www.jstage.jst.go.jp/article/jrd1992/39/4/39_4_269/_pdf/-char/en
Fukui Y, Kohno H, Togari T, Hiwasa M, Okabe K. Fertility after artificial insemination using a soybean-based semen extender in sheep. J Reprod Dev. 2008;54(4):286-9.
Mellisho E, Pinazo R, Chauca L, Cabrera P, Rivas V. Inseminación intrauterina vía laparoscópica de ovejas black belly con semen congelado. Rev Inv Vet. 2006;17(2):131-6.
Depaz B, Álvarez Y, Mellisho E. Efecto del tratamiento corto de progesterona en la fertilidad de ovinos pelibuey inseminado vía laparoscopia con semen congelado. SPERMOVA. 2011;1(jul.):123-4.
Hidalgo G, Rodríguez-Márquez J, Chango R, Mavarez M, Morales R, Rodríguez M, et al. Inseminación intrauterina por laparoscopia en ovejas mestizas West African utilizando semen Dorper congelado en pajuelas y pellets. Rev Cient Vet. 2015;25(5):395-401.
Azawi OI, Al-Mola MK. A study on the effect of GnRH administration on the ovarian response and laparoscopic intrauterine insemination of Awassi ewes treated with eCG to induce superovulation. Trop Anim Health Prod. 2011;43(7):1351-5. doi: 10.1007/s11250-011-9856-7.




