Detección por pcr de Anaplasma spp. en caprinos del municipio de Los Santos, Santander‑Colombia

Ángela Jiménez; Alba García; Carolina Angulo; Joaquín Gómez

doi:10.16925/sp.v9i19.704

Detection ofAnaplasma spp.using pcr in Goats in the Municipality of Los Santos in Santander, Colombia

Investigación

https://doi.org/10.16925/sp.v9i19.704

Ángela Jiménez Ver Biografía

Universidad Cooperativa de Colombia. Sede Bucaramanga.

Alba García Ver Biografía

Universidad Cooperativa de Colombia. Sede Bucaramanga.

Carolina Angulo Ver Biografía

Universidad Cooperativa de Colombia. Sede Bucaramanga.

Joaquín Gómez Ver Biografía

Universidad Cooperativa de Colombia. Sede Bucaramanga.

A nested pcr assay was applied to a portion of 347 bp of the msp5 gene of Anaplasma spp. in goats of the Mesa de Los Santos,Santander. A sample of 99 animals was selected from among 600 individuals, using a proportional affixation. Each goat underwent a semiological exam and the removal of a blood sample for nested pcr a ss ay, measurement of hematocrit, hemoglobin, evaluation of red blood cell morphology and direct observation of the microorganism in extended peripheral blood stained with Giemsa. 7.1% of the goats tested positive for pcr and 4% by direct observation; however, only one of the positives for extended peripheral blood was confirmed as a positive using pcr.Howell-Jolly bodies were the most common finding during evaluation of the morphology of erythrocytes. None of the goats found to be positive showed signs of compatibility with the clinical signs of anaplasmosis at the time of the test, while hemoglobin and hematocrit measurements indicated slight anemia in two of the animals.

Keywords: anaplasmosis, diagnóstico molecular, Gen msp5, pequeños rumiantes, tinción de Giemsa

Herrera M, Soto A, Urrego V, Rivera G, Zapata M, Ríos L. Frecuencia de hemoparásitos en bovinos del bajo Cauca y alto San Jorge, 2000-2005. Rev MVZ Córdoba.2008; 13(3): 1486‑94.

Brenner DJ, Krieg NR, Garrity GM, Staley JT, editores. Bergey’s manual of systematic bacteriology: The proteobacteria. Parte 3. Family II. Anaplasmataceae. Genus I. Anaplasma. 2 ed. Nueva York: Springer; 2005. 120-122.

Tavares‑Marques LM, Núñez C, Rey-Vailerón C, Reyna‑Bello A. Evidencia serológica de Anaplasma spp. en pequeños rumiantes de Venezuela utilizando msp5 recombinante en ensayos inmunoenzimáticos. Rev Cient (Maracaibo). 2010; 20(5): 506‑11.

De la Fuente J, Lew A, Lutz H, Meli ML, Hofmann‑Lehmann R, Shkap V, et al. Genetic diversity of anaplasma species major surface proteins and implications for anaplasmosis serodiagnosis and vaccine development. Anim. Health Res Rev. Jun 2005; 6(1): 75‑89.

Smith M, Sherman D. Goat medicine. Blood, Lymph, and Immune Systems. 2 ed. Nueva York: Editorial Wiley-Blackwell; 2009.p. 870.

Figueroa M, Vargas L, Mendoza L, Acevedo O, Chavarria M, Fonseca E, Moya F. Enfermedades infecciosas de los animales domésticos en Centroamérica. San José (Costa Rica): Editorial euned; 1984. p. 691.

Ávila‑Pulgarín LS., Acevedo‑Restrepo A, Jurado‑Guevara JA, Polanco Echeverry D, Velázquez Vélez R, Zapata Salas R. Infección por hemoparásitos en caprinos y ovinos de apriscos de cinco municipios del norte y nororiente de Antioquia (Colombia). Ces Med Vet Zootec. 2013; 8(1): 11‑21.

Ramos RA, Ramos CA, Araújo FR, Melo ES, Tembue AA, Faustino MA, et al. Detecção de anticorpos para anaplasma sp. em pequenos ruminantes no semi-árido do estado de Pernambuco, Brasil. Rev Bras Parasitol Vet. 2008; 17(2): 115‑117.

Espinal CF, Martínez H, Amézquita JE. La cadena ovinos y caprinos en Colombia. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Observatorio Agrocadenas Colombia. Documento de Trabajo No. 125. Dic 2006.

Ndung’u LW, Aguirre C, Rurangirwa FR, McElwain TF, McGuire TC, Knowles DP, Palmer GH. Detection of Anaplasma Ovis infection in goats by major surface protein 5 competitive inhibition enzyme-linked immunosorbent assay. J Clin Microbiol. Mar 1995; 33(3): 675‑679.

Dohoo I, Martin S, Stryhn H. Veterinary Epidemiologic Research. Charlotetown, Prince Edward (Canadá): avc Inc; 2003. p. 720.

Arcila V, Cala F, Castellanos V. Patología y diagnóstico clínico veterinario [cd‑room]. Sexta edición. Bucaramanga: Universidad Cooperativa de Colombia; 2005.

Reagan, WJ, Sanders, TG, DeNicofa DB. Hematología veterinaria. Atlas de especies domesticas comunes. Madrid: Harcourt Brace; 1999.

Yarce F, Sanjuan J. Determinación por pcr de la posible transmisión transplacentaria de Anaplasma spp. en bovinos [Trabajo de grado]. Bucaramanga: Universidad Cooperativa de Colombia. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia; 2011. p. 158.

Jiménez ‑Ocampo R, Rodríguez Caramillo SD, Rosario Cruz R, Orozco Vega LE, de la Fuente J. Anaplasma marginale: análisis de las secuencias del fragmento variable del gen msp1α y del gen msp4 de cuatro nuevas cepas mexicanas. Téc Pecu Méx. 2008; 46(1): 69‑78.

Shompole S, Waghela SD, Rurangirwa FR, McGuire TC. Cloned dna probes identify Anaplasma ovis in Goats and reveal a high Prevalence of Infection. J Clin Microbiol. Dic 1989; 27(12): 2730‑5.

Torina A, Vicente J, Alongi A, Scimeca S, Turla R, Nicosia S, et al. Observed Prevalence of tick-borne pathogens in domestic animals in Sicily, Italy during 2003‑2005. Zoonoses Public Health. Journal compilation. 2007; 54(1): 8-5.

Sathaporn, J. Prevalence of anaplasmosis and eperythrozoonosis of goats in Satun province. Kasetsart J (Nat Sci). 2005; 39(5): 35-41

Ahmadi-Hamedani M, Khaki Z, Rahbari S, Kazemi B, Bandehpour M. Molecular identification of anaplasmosis in goats using a new pcr-rflp method. Iranian Journal of Veterinary Research. 2009; 10(4), Ser 29: 367‑372.

Tavares‑Marques L, Reyna‑Bello A. Estandarización de la técnica de pcr para el diagnóstico de la anaplasmosis bovina y ovina. Agronomía Trop. 2006; 56(4): 501‑512.

Rangel N, Rodríguez C. Determinación de seropositividad a Anaplasma phagocytophila en equinos mediante la técnica diagnóstica de inmunofluorescencia indirecta de anticuerpos (ifi) en pesebreras ubicadas en los municipios de Floridablanca, Piedecuesta, Bucaramanga y Lebrija [Trabajo de grado]. Bucaramanga: Universidad Cooperativa de Colombia; 2006. 79 p.

Rymaszewska A, Grenda S. Bacteria of the genus Anaplasma characteristics of Anaplasma and their vectors:a review. Veterinarni Medicina. 2008; 53(11): 573‑584.

Vizcano G. Epidemiología diagnóstico y control de enfermedades parasitarias en bovinos. Anaplasmosis y babesiosis en bovinos: avances en su diagnóstico, epidemiologia y control. Compendio No. 2. Medellín: Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica); 1996. p. 93.

Jiménez, Ángela, García, A., Angulo, C., & Gómez, J. (2013). Detection ofAnaplasma spp.using pcr in Goats in the Municipality of Los Santos in Santander, Colombia. Spei Domus, 9(19), 11-16. https://doi.org/10.16925/sp.v9i19.704

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Issue

Vol. 9 No. 19 (2013)

Published

2013-12-01

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