Detección por pcr de Anaplasma spp. en caprinos del municipio de Los Santos, Santander‑Colombia
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Mediante pcr semianidada se amplificó una porción de 347 pb del gen msp5 para determinar la presencia de Anaplasma spp. en caprinos de la Mesa de Los Santos, Santander. A partir de 600 individuos se seleccionó una muestra de 99 animales utilizando una afijación proporcional. A cada uno de los caprinos se les realizó un examen semiológico y la extracción de una muestra sanguínea para pcr semi-anidada, medición de hematocrito, hemoglobina, evaluación de la morfología de los glóbulos rojos y observación directa del microorganismo en extendidos de sangre periférica teñidos con Giemsa. El 7,1% de los caprinos resultaron positivos por pcr y 4% por observación directa; sin embargo, sólo uno de los positivos por extendido fue ratificado por la pcr como verdadero positivo. La presencia de cuerpos de Howell Jolly fue el hallazgo más frecuente durante la evaluación de la morfología de los eritrocitos. Ninguno de los caprinos encontrados como positivos presentó signos compatibles con el cuadro clínico de anaplasmosis en el momento del examen, en tanto, la medición del hematocrito y la hemoglobina revelaron anemia leve en dos de los animales.
Herrera M, Soto A, Urrego V, Rivera G, Zapata M, Ríos L. Frecuencia de hemoparásitos en bovinos del bajo Cauca y alto San Jorge, 2000-2005. Rev MVZ Córdoba.2008; 13(3): 1486‑94.
Brenner DJ, Krieg NR, Garrity GM, Staley JT, editores. Bergey’s manual of systematic bacteriology: The proteobacteria. Parte 3. Family II. Anaplasmataceae. Genus I. Anaplasma. 2 ed. Nueva York: Springer; 2005. 120-122.
Tavares‑Marques LM, Núñez C, Rey-Vailerón C, Reyna‑Bello A. Evidencia serológica de Anaplasma spp. en pequeños rumiantes de Venezuela utilizando msp5 recombinante en ensayos inmunoenzimáticos. Rev Cient (Maracaibo). 2010; 20(5): 506‑11.
De la Fuente J, Lew A, Lutz H, Meli ML, Hofmann‑Lehmann R, Shkap V, et al. Genetic diversity of anaplasma species major surface proteins and implications for anaplasmosis serodiagnosis and vaccine development. Anim. Health Res Rev. Jun 2005; 6(1): 75‑89.
Smith M, Sherman D. Goat medicine. Blood, Lymph, and Immune Systems. 2 ed. Nueva York: Editorial Wiley-Blackwell; 2009.p. 870.
Figueroa M, Vargas L, Mendoza L, Acevedo O, Chavarria M, Fonseca E, Moya F. Enfermedades infecciosas de los animales domésticos en Centroamérica. San José (Costa Rica): Editorial euned; 1984. p. 691.
Ávila‑Pulgarín LS., Acevedo‑Restrepo A, Jurado‑Guevara JA, Polanco Echeverry D, Velázquez Vélez R, Zapata Salas R. Infección por hemoparásitos en caprinos y ovinos de apriscos de cinco municipios del norte y nororiente de Antioquia (Colombia). Ces Med Vet Zootec. 2013; 8(1): 11‑21.
Ramos RA, Ramos CA, Araújo FR, Melo ES, Tembue AA, Faustino MA, et al. Detecção de anticorpos para anaplasma sp. em pequenos ruminantes no semi-árido do estado de Pernambuco, Brasil. Rev Bras Parasitol Vet. 2008; 17(2): 115‑117.
Espinal CF, Martínez H, Amézquita JE. La cadena ovinos y caprinos en Colombia. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Observatorio Agrocadenas Colombia. Documento de Trabajo No. 125. Dic 2006.
Ndung’u LW, Aguirre C, Rurangirwa FR, McElwain TF, McGuire TC, Knowles DP, Palmer GH. Detection of Anaplasma Ovis infection in goats by major surface protein 5 competitive inhibition enzyme-linked immunosorbent assay. J Clin Microbiol. Mar 1995; 33(3): 675‑679.
Dohoo I, Martin S, Stryhn H. Veterinary Epidemiologic Research. Charlotetown, Prince Edward (Canadá): avc Inc; 2003. p. 720.
Arcila V, Cala F, Castellanos V. Patología y diagnóstico clínico veterinario [cd‑room]. Sexta edición. Bucaramanga: Universidad Cooperativa de Colombia; 2005.
Reagan, WJ, Sanders, TG, DeNicofa DB. Hematología veterinaria. Atlas de especies domesticas comunes. Madrid: Harcourt Brace; 1999.
Yarce F, Sanjuan J. Determinación por pcr de la posible transmisión transplacentaria de Anaplasma spp. en bovinos [Trabajo de grado]. Bucaramanga: Universidad Cooperativa de Colombia. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia; 2011. p. 158.
Jiménez ‑Ocampo R, Rodríguez Caramillo SD, Rosario Cruz R, Orozco Vega LE, de la Fuente J. Anaplasma marginale: análisis de las secuencias del fragmento variable del gen msp1α y del gen msp4 de cuatro nuevas cepas mexicanas. Téc Pecu Méx. 2008; 46(1): 69‑78.
Shompole S, Waghela SD, Rurangirwa FR, McGuire TC. Cloned dna probes identify Anaplasma ovis in Goats and reveal a high Prevalence of Infection. J Clin Microbiol. Dic 1989; 27(12): 2730‑5.
Torina A, Vicente J, Alongi A, Scimeca S, Turla R, Nicosia S, et al. Observed Prevalence of tick-borne pathogens in domestic animals in Sicily, Italy during 2003‑2005. Zoonoses Public Health. Journal compilation. 2007; 54(1): 8-5.
Sathaporn, J. Prevalence of anaplasmosis and eperythrozoonosis of goats in Satun province. Kasetsart J (Nat Sci). 2005; 39(5): 35-41
Ahmadi-Hamedani M, Khaki Z, Rahbari S, Kazemi B, Bandehpour M. Molecular identification of anaplasmosis in goats using a new pcr-rflp method. Iranian Journal of Veterinary Research. 2009; 10(4), Ser 29: 367‑372.
Tavares‑Marques L, Reyna‑Bello A. Estandarización de la técnica de pcr para el diagnóstico de la anaplasmosis bovina y ovina. Agronomía Trop. 2006; 56(4): 501‑512.
Rangel N, Rodríguez C. Determinación de seropositividad a Anaplasma phagocytophila en equinos mediante la técnica diagnóstica de inmunofluorescencia indirecta de anticuerpos (ifi) en pesebreras ubicadas en los municipios de Floridablanca, Piedecuesta, Bucaramanga y Lebrija [Trabajo de grado]. Bucaramanga: Universidad Cooperativa de Colombia; 2006. 79 p.
Rymaszewska A, Grenda S. Bacteria of the genus Anaplasma characteristics of Anaplasma and their vectors:a review. Veterinarni Medicina. 2008; 53(11): 573‑584.
Vizcano G. Epidemiología diagnóstico y control de enfermedades parasitarias en bovinos. Anaplasmosis y babesiosis en bovinos: avances en su diagnóstico, epidemiologia y control. Compendio No. 2. Medellín: Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica); 1996. p. 93.
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