• Investigación

    Influência das secreções de células do oviduto cultivadas in vitro sobre a viabilidade de espermatozoides bovinos congelados-descongelados

    Vol. 11 Núm. 22 (2015)
    Publicado: 06/01/2015
    Patrícia Valleriote
    Carla Paes de Carvalho
    Diego Fernando Dubeibe
    Edgar Mauricio Mogolllón
    Angelo Jose Burla

    Introducción: na espécie bovina, o oviduto joga um papel fundamental nos processos de maturação, fertilização e aquisição de competências para o adequado desenvolvimento do embrião até blastocisto. Visto que as células do revestimento interno do oviduto proporcionam substancias que afetam positivamente o desempenho dos espermatozoides, à medida que os espermatozóides atravessam o trato genital da fêmea, os componentes da superfície celular são modificados ou removidos pelas secreções ali presentes, ditas modificações podem incluir depleção do colesterol na superfície espermática, alteração nos glicosaminoglicanos e mudanças nos íons.

    Metodología: com base nestas razões objetivo-se neste trabalho avaliar a influência da adição de meio de cultura de células de oviduto bovino sobre parâmetros espermáticos como motilidade, vigor e integridade de membrana citoplasmática. Os espermatozoides foram incubados com 164 μL de Talp-sp-Uso no grupo controle (TCt); 161,5 μL de Talp-sp-Uso, acrescido de 2,5 μL de heparina (20µg/mL) no tratamento 1 (THep) e 128 μL de Talp-sp uso, acrescido de 36 μL de meio de cultivo com secreções de células do oviduto bovino no Tratamento 2 (TOv). As avaliações foram feitas no tempo zero (para mostrar que os meios dos diferentes tratamentos não prejudicaram os espermatozoides) e após 3 horas de incubação.

    Resultados: não foram encontradas diferenças significativas nos parâmetros de motilidade progressiva, vigor e integridade de membrana celular entre os tratamentos propostos. No entanto, espermatozoides cultivados com secreções de células do oviduto apresentaram maior percentagem de motilidade total às 3 h de cultivo, em comparação a espermatozoides cultivados na presença de heparina.

    Conclusão: as secreções de células do oviduto não afetam a motilidade progressiva, nem o vigor ou a integridade da membrana citoplasmática dos espermatozoides, porém, prolongam a motilidade total dessas células.

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    Cómo citar

    Valleriote, P., Paes de Carvalho, C., Dubeibe , D. F., Mogolllón , E. M., & Burla , A. J. (2015). Influência das secreções de células do oviduto cultivadas in vitro sobre a viabilidade de espermatozoides bovinos congelados-descongelados. Spei Domus, 11(22). https://doi.org/10.16925/sp.v11i22.1158

    Areekijseree, M. And Veerapraditsin, T. Characterization of porcine oviductal epithelial cells, cumulus cells and granulosa cells-conditioned media and their ability to induce acrosome reaction on frozen-thawed bovine spermatozoa. Micron. 2008; v.39 (2): 160- 167.

    Hunter, R. H. Components of oviduct physiology in eutherian mammals. Biological Reviews of the Cambridge Philosophical Society. 2012.; v. 87 (1): 244–255.

    Ghersevich, S; Massa, E Y Zumoffen, C. Oviductal secretion and gamete interaction. Reproduction. 2015; v.149: 1–14.

    Coy, P; García-Vázquez, F.A; Visconti, P. E; Avilés, M. Roles of the oviduct in mammalian fertilization. 2012; v.144: 649–660.

    Pereira, R. J; Tuli, R. K; Wallenhorst, S; Holtz, W. The Effect of Heparin, Caffeine and Calcium Ionophore A23187 on in vitro Induction of the Acrosome Reaction in Frozen-Thawed Bovine and Caprine Spermatozoa. Theriogenology. 2000; v. 54 (2): 185-192.

    Junqueira, L.C; Carneiro, J. Histologia básica. 10ª edição. Rio de Janeiro: Editora Guanabara Koogan; 2004.

    Aguilar, J.; Reyley, M. The uterine tubal fluid: secretion, composition and biological effects. Animal Reproduction. 2005; v.2: 91-105.

    Walter, I.; Bavdek, S. Lectin binding patterns of porcine oviduct mucosa and endometrium during the oestrous cycle. Journal of Anatomy. 1997; v. 190: 299-307.

    Kamaci, M; Suludere, Z; Irmak, K; Can, C; Bayhan, H. Observation of isthmic epithelial cells from fallopian tubes at follicular phase by light and scanning electron microscope. Eastern Journal of Medicine. 1999; v. 4 (2): 51-53.

    Leese, H.J; Tay, J.I; Reischl, J; Downing, S.J. Formation of Fallopian tubal fluid: role of a neglected epithelium. Reproduction. 2001; v. 121 (3): 339-346.

    Lapointe, J; Bilodeau, J.F. Antioxidant defenses are modulated in the cow oviduct. Biology of Reproduction. 2003; v. 68 (4): 1157-1164.

    Grippo, A. A.; Way, A.L.; Killian, G.J. Effect of bovine ampullary and isthmic oviductal fluid on motility, acrosome reaction and fertility of bull spermatozoa. Journal of Reproduction and Fertility. 1995; v. 105 (1): 57-64.

    Killian, G.J. Evidence for the role of oviduct secretions in sperm function, fertilization and embryo development. Animal Reproduction Science. 2004; v. 82: 141-153.

    Grippo, A; Luo, Y;, Rougeau, B And Wyatt,W. Monosaccharides are not detected in whole or isthmic bovine oviductal fluid collected throughout the estrous cycle, as analyzed by HPLC. Theriogenology. 2000; v. 53 (3):717-726.

    Locatelli, Y; Cognié, Y; Vallet, J.C; Baril, G; Verdier, M; Poulin, N; Legendre, X; Mermillod, P. Successful use of oviduct epithelial cell coculture for in vitro production of viablered deer (Cervus elaphus) embryos. Theriogenology. 2005; 64 (8): 1739-1739.

    Buhi, W.C. Characterization and biological roles of oviduct-specific, oestrogen-dependent glycoprotein. Reproduction. 2002; v.123 (3): 355-362.

    Leese, H.J. The formation and function of oviduct fluid. Journal of Reproduction and Fertility. 1988; v.82: 843-856.

    Gandolfi, F.; Brevini, J. A.; Richardson, L.; Brown, C.R.; Moor, R.M. Characterization of proteins secreted by sheep oviduct epithelial cells and their function in embryonic development. Development. 1989; v. 106 (2): 303-312.

    Yanagimachi, R. Mammalian fertilization. Em: Knobil, E. E Neill J.D. The Physiology of Reproduction. 2da edição. Nova York: Raven Press; 1994. 189-317.

    Flesch, F.M.; Gadella, B.M. Dynamics of the mammalian sperm plasma membrane in the process of fertilization. Biochimica et Biophysica Acta. 2000; v.1469 (3): 197-235.

    Roldan, E.R.S; Gomendio, M. Morphological, functional and biochemical changes underlying the preparation and selection of fertilizing spermatozoa in vitro. Animal Reproduction Science. 1992; v.28: 69-78.

    Gordon, I. Laboratory Production of Cattle Embryos. 1ra edición. Londres: CAB International. Wallingford; 1994.

    Pérez, L.J; Valcarcel, A; De Las Heras, M. A; Moses, D. F; Baldassare, H. In vitro capacitation and induction of acrossomal exocytosis in ram spermatozoa as assessed by the chlortetracycline assay. Theriogenology. 1996; v. 45 (5): 1037-1046.

    Perez, L.J.; Valcárcel, A.; Heras, M.A.; Baldassarre, H. Comparative study of four techniques for evaluation of sperm quality in ovine and bovine frozen thawed samples. Reproduction in Domestic Animal. 1997; v.32: 157-160.

    Suarez S.S. Regulation of sperm storage and movement in the mammalian oviduct. Int J Dev Biol. 2008; v.52 (5–6): 455–462.

    Hafez, E.S.E. Reprodução Animal. 7ª edição. São Paulo: Ed. Manole Ltda; 2004.

    Buffone, M. G; Hirohashi, N; Gerton, G, L. Unresolved Questions Concerning Mammalian Sperm Acrosomal Exocytosis. Biology of Reproduction. 2014; v.90 (5):112: 1–8.

    Quintero, I; Ghersevich, S; Caille, A; Munuce, M; Daniele, S And Lida Morisol. Effects of human oviductal in vitro secretion on spermatozoa and search of sperm–oviductal proteins interactions. International Journal of Andrology. 2005; 28 (3): 137–143.

    Parrish, J.J. Bovine in vitro fertilization: in vitro oocyte maturation and sperm capacitation with heparin. Theriogenology. 2014; v.81 (1): 67-73.

    Valleriote, P.S; Dias, A.J.B; Paes De Carvalho, F; Paes Sobrinho, C. Criopreservação de sêmen ovino em solução de trealose. Acta Scientiae Veterinariae. 2005; v.33, Sup l.1:.310

    Correa,J.R; Pace, M.M; Zavos, P.M. Relationships among frozen-thawed sperm characteristics assessed via the routine semen analysis, sperm functional test and fertility of bulls in an artificial insemination program. Theriogenology. 1997; v.48:721-203.

    Pertoft, H; Laurent, T.C; Laas, T; Kagedal, L. Density gradients prepared from colloidal silica particles coated by polyvinylpyrrolidone (Percoll). Analytical Biochemistry. 1978; v. 88 (1): 271-282.

    Zúccari, C.E; Carrijo, P.R; Leite, P.A; Scaldelai, P.R; Rodovalho, N. C; Zanenga, C.A; Kiefer, C; Costa E Silva, E.V. Seleção em gradiente de Percoll® sobre os parâmetros espermáticos do sêmen bovino congelado. Rev. Bras. Saúde Prod. An. 2008; v.9 (2): 358-366.

    Kumaresan, A; Ansari, M.R; Garg, A. Modulation of post-thaw sperm functions with oviductal proteins in buffaloes. Animal Reproduction Science. 2005; v. 90 (1-2): 73-84.

    Yao Y.Q; Ho P.C; Yeung W.S. Human oviductal cells produce a factor(s) that maintains the motility of human spermatozoa in vitro. Fertility and Sterility. 2000; v. 73 (3):479–486.

    Boquest A. C., Smith J. F, Briggs R. M., Duganzich D. M And. Summers P. M ; Effects of bovine oviductal proteins on bull spermatozoal function. Theriogenology. 1999; v.51 (3): 583-595.

    Imam, S; Ansari, M.R; Kumar, A; Singh, C; Bharti, V.K; Kumaresan, A. Effect of Oviductal Proteins on Structural and Functional Characteristics of Cryopreserved Sperm in Murrah Buffaloes. Reprod. Dom. Anim. 2010; v. 45 (2): 302-306.

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